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對流免疫電泳實驗
點擊次數(shù):1873 更新時間:2016-02-17

    對流免疫電泳是在瓊脂擴散基礎上結(jié)合電泳技術(shù)而建立的一種簡便而快速的方法。此方法能在短時間內(nèi)出現(xiàn)結(jié)果,故可用于快速診斷,敏感性比雙向擴散技術(shù)高10-15倍。

    血清蛋白在PH8.6條件下帶負電荷,所以在電場作用下都向E極移動。但由于抗體分子在這樣的PH條件下只帶微弱的負電荷,而且它的分子量又較大(為r球蛋白)。所以游動慢。更重要的是抗體分子受電滲作用影響較大,也就是說點滲作用大于它本身的遷移率。所謂電滲作用是指在電場中溶液對于一個固定固體的相對移動。瓊脂是一種酸性物質(zhì),在堿性緩沖液中進行電泳,它帶有負電荷,而與瓊脂相接觸的水溶液就帶正電荷,這樣的液體便向負極移動??贵w分子就是隨著帶正電荷的液體向負極移動的。而一般的蛋白質(zhì)(如血清抗原)也受電滲作用的影響,使泳動速度減慢,但它的電泳遷移率遠遠大于電滲作用。這樣抗原體就達到了定向?qū)α?,在兩者相遇且比例合適時便形成肉眼可見的沉淀線。

(一)材料

1、診斷血清:免抗人免疫血清

2、待檢血清:人血清

3、陰性對照血清

4、pH8.6、離子強度0.05M緩沖液配方:1.84克,鈉10.3克,加蒸餾水1000毫升,調(diào)pH至8.6。

5、緩沖瓊脂板:將純化的瓊脂用PH8.6離子強度0.025的緩沖液(用0.05M的緩沖液稀釋一倍即可)配成1.5%的瓊脂,加入 0.01-0.02%流柳汞防腐,保存冰箱內(nèi)備用。

6、電泳儀

7、其他:生理鹽水、打孔器、微量進樣器

(二)方法

1、瓊脂板的制備根據(jù)需要可選用大玻板(6厘米×9厘米)和(小玻片)兩種。大玻板約需瓊脂10毫升,小玻片約需3.5毫升,凝固后按圖打孔,方法同瓊脂擴散實驗。

2、加樣:左側(cè)孔內(nèi)加患者血清(原血清及10倍稀釋血清各占一孔),右側(cè)內(nèi)加抗血清,每片應有陽性對照。

3、電泳

    用國產(chǎn)普通電泳儀。其內(nèi)加0.05mPH8.6的緩沖液,加至電泳槽高度的三分之二處,注意兩槽內(nèi)液面盡量水平。將加好樣品的玻板置于電泳槽上,抗原端接負極,抗體端接正極,用2—4層濾紙浸濕作鹽橋,濾紙與瓊脂板聯(lián)接處為0.5厘米。以板寬度計算電流,以板的長度計算電壓。要求電流量為2— 3毫安/厘米,即大板為20毫安,小板為10毫安。電壓為4—6伏/厘米。通電45分鐘—2小時后觀察結(jié)果。

4、結(jié)果觀察

    在黑色背景上方,用散射光多個角度觀察,在對孔之間有白色沉淀線即為陽性對照應出現(xiàn)明顯的白色沉淀線。如果抗原,兩極微沉淀條紋不清晰,于37℃保溫數(shù)小時可增強沉淀條紋的清晰度。

5、影響結(jié)果的因素

(1)抗原抗體的比例:抗原抗體比例適應時容易出現(xiàn)沉淀帶,反之不易發(fā)生。當抗體濃度恒定時,被檢血清含甲胎蛋白濃度高時,作10倍、20倍或更高倍數(shù)稀釋可以提高陽性率。隨稀釋度的增加,抗原抗體的比例發(fā)生變化,沉淀線由靠近抗血清孔向逐步移向兩孔中間,并可出現(xiàn)不典型的沉淀線如弧形、八字須形、斜線形,這些也是陽性,應予注意。

(2)組電泳緩沖液其電泳結(jié)果以鈉—鹽酸緩沖液靈敏度zui高。—鈉次之。Tris緩沖液更差。

(3)電壓與電流時電泳時間需要長些:電壓電流增大時,電泳時間可更短。但電壓過高則孔徑變形,電流過大抗原抗體蛋白易變性,干擾實驗結(jié)果。一般選擇每厘米5毫升,電泳時間改為1.5小時.

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